Die vorliegende Arbeit widmet sich der Konstruktion und Charakterisierung von künstlichen biochemischen Regelkreisen.
In einem Teilprojekt konnte gezeigt werden, wie sich ein Aptamer für Taq-Polymerase durch eine gezielte Abfolge von Strangverdrängungsreaktionen schaltbar machen läßt, wodurch eine gezielte Kontrolle über die enzymatische Aktivität der Polymerase gewonnen wird.
Außerdem konnte demonstriert werden, wie ein synthetisches biochemisch-oszillatorisches In-vitro-System auf Basis von DNA- bzw. RNA-Oligonukleotiden und nukleinsäuremodifizierenden Enzymen erfolgreich für die Ankopplung und Taktung nachgelagerter Prozesse verwendet werden konnte. So wurde die zeitlich gesteuerte Transkription einer funktionalen RNA-Spezies - einem Aptamer für einen Fluoreszenzfarbstoff - und die zyklische Konformationsänderung von »DNA-Tweezers« implementiert. Ein wesentliches Anliegen dabei war, zunächst die Reproduzierbarkeit des Systems deutlich zu verbessern, sein Verhalten unter Last, d.h. unter Ankopplung der geschilderten funktionalen Module zu charakterisieren und ein modellhaftes Verständnis zu erhalten.
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Die vorliegende Arbeit widmet sich der Konstruktion und Charakterisierung von künstlichen biochemischen Regelkreisen.
In einem Teilprojekt konnte gezeigt werden, wie sich ein Aptamer für Taq-Polymerase durch eine gezielte Abfolge von Strangverdrängungsreaktionen schaltbar machen läßt, wodurch eine gezielte Kontrolle über die enzymatische Aktivität der Polymerase gewonnen wird.
Außerdem konnte demonstriert werden, wie ein synthetisches biochemisch-oszillatorisches In-vitro-System auf Basis von...
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