Pflanzliche Acyltransferasen katalysieren die Modifikation Von Sekundär metaboliten mit Resten organischer Säuren, um so ihre Funktion zu verändern, mit daraus resultierenden chemotypischen und phänotypischen Auswirkungen. Studien mit Arabidopsis thaliana ermöglichten die Identifizierung und funktionale Charakterisierung einiger dieser Enzyme. Jedoch ist die Mehrzahl an der Acyltransferasen noch immer nicht gut erforscht, weshalb Fortschritte auf diesem Gebiet unser Verständnis des pflanzlichen Sekundärmetabolismus erweitern werden.
Im ersten Teil dieser Dissertation wird gezeigt, dass die BAHD Acyltransferase PMAT1 die Fähigkeit besitzt, eine glukosilierte Version des Brassinosteroids (BR) Brassinolid (BL) zu malonylieren. BRs sind Steroidhormone, welche essentiell für die Wachstumskontrolle und Stressantwort von Pflanzen sind. PMAT1 knock-out Mutanten, die mit BL behandelt wurden, konnten kein BL-23-O-Malonylglukosid (BL-23MalGlc) mehr bilden. Eine Überexpression von PMAT1 in einer Linie, in der die UDP-Glukosyltransferase UGT73C6 überexprimiert und somit die Bildung von BR-Glukosid erhöht ist, verstärkte den BR-Mangel-Phänotyp von UGT73C6oe Pflanzen. In Übereinstimmung damit war die Kapazität an BR Signalübertragung durch die PMAT1 Überexpression in UGT73C6oe Linien verringert, was sich dadurch äußerte, dass BR Biosynthese-Gene induziert waren, welche durch BR Feedbackregulation unterdrückt werden.
Im zweiten Teil der Dissertation werden Ergebnisse vorgestellt welche nahelegen dass PMAT1 und sein nächster Verwandter PMAT2 zusätzlich zu BR-Glukosiden auch Scopolin, ein Hydroxycumarin, welches für Abwehr-Reaktionen von Pflanzen wichtig ist, malonylieren können. Eine PMAT1 knock-out Mutante konnte kein Malonylscopolin mehr produzieren. Überexpression von PMAT1 und PMAT2 verursachte dagegen eine Überakkumulation von Malonylscopolin und erhöhte Resistenz gegenüber extern appliziertem Scopoletin, das Aglykon von Scopolin.
Im dritten Teil der Dissertation wurde die Acyltransferase BIA1 charakterisiert, von welcher vermutet wurde, an der BR Homöostase beteiligt zu sein, da BIA1 Überexpression zu starken BR-Mangel Phänotypen führte. Jedoch waren die Substrate von BIA1 bis zur Beginn der Arbeit unbekannt geblieben. Es wird gezeigt, dass BIA1 castasterone (CS) und CS Varianten unter Verwendung von Acetyl-CoA als Donor-Substrat acetyliert. Fütterungsversuche mit BIA1 Überexpressionslinien offenbarten, dass mono- und di-acetylierte Formen von CS in den Überexpressionslinien in verstärktem Maße gebildet wurden. Diese Produkte waren in einer bia1 Knock-out Mutante nicht vorhanden, was bestätigt, dass BIA1 für die CS-Acetylierung benötigt wird.
Zusammenfassend charakterisiert diese Arbeit die Aktivität von mehreren Acyltransferasen, welche am Katabolismus von BRs beteiligt sind und zeigt, dass zusätzliche Substrate wie Scopolin Akzeptoren sind. Es wird diskutiert auf welche Weise diese zahlreichen enzymatischen Aktivitäten koordiniert sein könnten.
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Pflanzliche Acyltransferasen katalysieren die Modifikation Von Sekundär metaboliten mit Resten organischer Säuren, um so ihre Funktion zu verändern, mit daraus resultierenden chemotypischen und phänotypischen Auswirkungen. Studien mit Arabidopsis thaliana ermöglichten die Identifizierung und funktionale Charakterisierung einiger dieser Enzyme. Jedoch ist die Mehrzahl an der Acyltransferasen noch immer nicht gut erforscht, weshalb Fortschritte auf diesem Gebiet unser Verständnis des pflanzlichen...
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