Eine der wichtigsten Klassen von Membranproteinen sind G-Protein-gekoppelte Rezeptoren (GPCRs). GPCRs stellen einen großen Teil des Protein-kodierenden Genoms dar und sind für viele biochemische Prozesse verantwortlich, die von Krebs bis zur Neurologie reichen. Aufgrund ihrer großen Rolle in der Physiologie und Pathophysiologie zielen viele Medikamente auf GPCRs ab, bis heute etwa 1/3 aller von der FDA zugelassenen Medikamente. Um diese Prozesse besser zu verstehen und Medikamente zu entwickeln, die auf diese Signalwege abzielen, ist es von größter Bedeutung, ein tieferes Verständnis der Struktur und Dynamik von GPCRs und ihren entsprechenden G-Proteinen zu erlangen.
In dieser Arbeit verwendete ich evolutionär stabilisierte Neurotensin-1-Rezeptor (NTR1) -Varianten mit unterschiedlicher Signalkapazität als Modellsystem für die Untersuchung der Dynamik und Wechselwirkungen eines GPCR mittels NMR-Spektroskopie. Der Grund für diese Wahl ist eine einfache und effektive Herstellung dieses GPCR in E. coli, die für die Isotopenmarkierung für Kernspinresonanz (nuclear magnetic resonance, NMR) – Spektro-skopieexperimente benötigt wird. Auf der G-Protein-Seite wurde entweder das aus Insektenzellen extrahierte heterotrimere G-Protein oder die in E. coli hergestellte Alpha-Untereinheit (Gα) verwendet. Das Hauptziel war es, die Auswirkungen der Dynamik von GPCRs und G-Proteinen auf ihre Wechselwirkung miteinander zu verstehen.
Das erste Ziel war es, die Rolle des Nukleotidzustands von Gα auf seine Struktur und Dynamik und damit auf seine Wechselwirkung mit einem aktivierten GPCR zu untersuchen. Dabei habe ich gezeigt, dass Gα in einem Apo-Zustand die höchste Affinität zu einem aktivierten GPCR sowie eine offene Konformation aufweist, die die GTP-Bindung verstärkt. In Übereinstimmung mit diesen Befunden zeigt GTP-gebundenes Gα keine signifikante Affinität zu einem aktivierten GPCR mit einer eng geschlossenen Konformation. Ich habe in diesem Projekt NMR-Experimente zur Untersuchung von markiertem Gα verwendet. Der zweite Teil meiner Arbeit konzentrierte sich auf die GPCR-Seite. Daher wurden verschiedene Markierungsstrategien wie 13C-Methylsulfid oder selektive Isoleucin-, Leucin-, Valin- und Alanin-Markierung (ILVA) verwendet, um NMR-Experimente zum Nachweis allosterischer Strukturänderungen und -dynamiken während der Signalübertragung zu erleichtern. Ich konnte zeigen, dass die GPCR-Aktivierung den gesamten GPCR mit einem allosterischen Mechanismus beeinflusst, was zu einer Helix-6-Umlagerung auf der zytosolischen Seite führt. Dies ist wesentlich für die Wechselwirkung eines GPCR mit G-Proteinen. Darüber hinaus konnte ich die Bedeutung des „ionic lock“ Motivs bestätigen für die GPCR-Signalübertragung.
Zusammenfassend konnte ich ein tieferes Verständnis der Wechselwirkung zwischen GPCRs und G-Proteinen gewinnen, wobei ich mich auf jeden Bindungspartner konzentrierte. Dennoch sind zukünftige Experimente erforderlich, um die GPCR-Plastizität weiter zu charakterisieren und die allosterischen Strukturänderungen zu bestimmen, die erforderlich sind, um das durch Ligandenbindung induzierte Signal durch die Membran zu übertragen und ein gebundenes G-Protein zu aktivieren.
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Eine der wichtigsten Klassen von Membranproteinen sind G-Protein-gekoppelte Rezeptoren (GPCRs). GPCRs stellen einen großen Teil des Protein-kodierenden Genoms dar und sind für viele biochemische Prozesse verantwortlich, die von Krebs bis zur Neurologie reichen. Aufgrund ihrer großen Rolle in der Physiologie und Pathophysiologie zielen viele Medikamente auf GPCRs ab, bis heute etwa 1/3 aller von der FDA zugelassenen Medikamente. Um diese Prozesse besser zu verstehen und Medikamente zu entwickeln,...
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